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來源 | 解決方案 |
| 脫蠟不充分 | 延長切片脫蠟時間或更換新鮮二甲苯 |
| 無活性的一抗 | 更換新一批抗體 |
| 由于儲存不當，抗體無法發揮作用 | 將抗體分裝成較小的體積并儲存在冰箱中（-20 至 -70°C），并避免重復凍融循環?；蚋鶕圃焐痰恼f明儲存抗體。 |
| 抗體濃度太低 | 增加一抗和/或二抗的濃度?；蛘哌\行連續稀釋測試以確定提供最佳信噪比的最佳稀釋度 |
| 抗體 孵育時間不足 | 增加抗體 孵育時間 |
| 組織固定不充分或不正確 | 增加后固定時間或嘗試不同的固定劑 |
| 組織過度固定 | 減少后固定的持續時間。如果組織已經過度固定，請執行適當或推薦的抗原修復程序。 |
| 二抗和一抗不相容 | 使用可與一抗相互作用的二抗。例如，如果一抗是從兔子中產生的，則使用抗兔二抗 |
| 無活性二抗 | 更換新一批抗體 |
| 無活性 ABC 試劑 | 更換新一批試劑 |
| 酶底物 系統有缺陷或不相容 | 更換新一批試劑 |
| 底物孵育時間不足 | 增加底物孵育時間 |
| 封固劑不正確 | 選擇正確的封固劑 |
| 試劑使用順序錯誤或步驟省略 | 檢查注釋或使用的程序 |
來源 | 解決方案 |
| 一抗和/或二抗濃度過高 | 降低抗體濃度或進行滴定以確定一抗和二抗的最佳稀釋度 |
| 孵化時間太長 | 減少孵化時間 |
| 孵化溫度太高 | 降低孵化溫度 |
| 底物 孵育時間太長 | 減少底物孵育時間 |
| 切片變干 | 避免切片變干 |
來源 | 解決方案 |
| 切片清洗不充分 | 步驟之間至少清洗 3 次 |
| 組織含有內源性酶，例如過氧化物酶或堿性磷酸酶 | 在孵育一抗之前，使用甲醇或左旋咪唑溶液（阻斷 AP）中的 3% 過氧化氫（阻斷過氧化物酶）阻斷內源酶活性。 |
| 組織含有內源性生物素活性 | 在孵育一抗之前，使用親和素/生物素封閉試劑封閉內源生物素活性。 |
| 一抗與組織非特異性結合或抗體濃度過高 | 使用較高稀釋度的一抗可以減少非特異性結合 |
| 二抗與組織的非特異性結合 | 用來自同一物種的正常血清作為二抗處理組織。 |
| 二抗與類似物種的組織發生交叉反應，即兔抗大鼠 IgG 可能與小鼠組織發生交叉反應。 | 使用預吸附的第二抗體，即在小鼠組織上使用兔抗大鼠IgG，小鼠吸附，或在大鼠組織上使用兔抗小鼠IgG，大鼠吸附。 |
| 由于固定不充分導致組織抗原擴散 | 增加后固定時間 |
| 用于小鼠組織的小鼠抗體 | 一抗孵育前用 MouseOnMouse 封閉試劑處理組織 |
切片變干 | 避免切片變干 |
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