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            流式細(xì)胞抗體染色的原理

            更新時(shí)間:2025-10-16      點(diǎn)擊次數(shù):211
              流式細(xì)胞抗體染色是流式細(xì)胞術(shù)中的關(guān)鍵步驟,其原理基于抗原-抗體特異性結(jié)合,通過熒光標(biāo)記的抗體識(shí)別細(xì)胞表面或內(nèi)部的特定分子,結(jié)合流式細(xì)胞儀的光信號(hào)檢測實(shí)現(xiàn)細(xì)胞分型與定量分析。具體原理及操作要點(diǎn)如下:
             
              一、核心原理
             
              抗原-抗體特異性結(jié)合
             
              熒光標(biāo)記的抗體通過其抗原結(jié)合位點(diǎn),精準(zhǔn)識(shí)別細(xì)胞表面或內(nèi)部的特定分子(如蛋白質(zhì)、糖類等)。這種特異性結(jié)合是流式細(xì)胞術(shù)區(qū)分不同細(xì)胞類型的基礎(chǔ)。
             
              熒光信號(hào)激發(fā)與檢測
             
              結(jié)合后的熒光抗體在激光束照射下被激發(fā),產(chǎn)生特定波長的熒光信號(hào)。流式細(xì)胞儀通過光電倍增管等檢測器捕獲這些信號(hào),并將其轉(zhuǎn)換為電信號(hào),最終由計(jì)算機(jī)分析生成細(xì)胞分群圖譜。
             
              多參數(shù)分析
             
              流式細(xì)胞術(shù)可同時(shí)檢測多個(gè)熒光通道,實(shí)現(xiàn)對細(xì)胞表面標(biāo)記物、胞內(nèi)細(xì)胞因子、DNA含量等多參數(shù)的同步分析,從而全面表征細(xì)胞特性。
             
              二、染色方法分類
             
              表面抗原直接染色
             
              操作:將細(xì)胞與熒光偶聯(lián)抗體直接孵育,無需固定或破膜。
             
              適用場景:檢測細(xì)胞表面分子(如CD4、CD8等T細(xì)胞亞群標(biāo)記物)。
             
              優(yōu)勢:操作簡便,保留細(xì)胞活性,適用于后續(xù)功能實(shí)驗(yàn)。
             
              胞內(nèi)抗原染色
             
              操作:
             
              固定:使用多聚甲醛等試劑固定細(xì)胞,保持細(xì)胞形態(tài)并減少活性。
             
              破膜:通過Triton X-100等打孔劑在細(xì)胞膜上形成通道,使抗體進(jìn)入胞內(nèi)。
             
              染色:加入熒光偶聯(lián)抗體,與胞內(nèi)抗原(如細(xì)胞因子、轉(zhuǎn)錄因子)結(jié)合。
             
              適用場景:檢測胞內(nèi)分子(如IFN-γ、IL-2等細(xì)胞因子)。
             
              注意事項(xiàng):破膜步驟可能影響細(xì)胞骨架完整性,需優(yōu)化條件以減少非特異性結(jié)合。
             
              三、關(guān)鍵操作步驟
             
              樣本制備
             
              將組織或細(xì)胞懸液處理為單細(xì)胞狀態(tài),確保細(xì)胞活性(如使用肝素抗凝處理外周血,或通過酶解法消化實(shí)體組織)。
             
              調(diào)整細(xì)胞密度至適宜范圍(如每管含1×10?個(gè)細(xì)胞),保證實(shí)驗(yàn)組間一致性。
             
              抗體染色
             
              表面染色:
             
              加入熒光偶聯(lián)抗體至細(xì)胞懸液,輕柔混勻后避光孵育(通常2-8℃或冰上,30-60分鐘)。
             
              使用洗滌液(如預(yù)冷PBS)去除未結(jié)合抗體,減少背景干擾。
             
              胞內(nèi)染色:
             
              固定細(xì)胞后,加入破膜劑打孔,再加入熒光抗體孵育。
             
              若檢測細(xì)胞因子,可提前用高爾基體阻斷劑(如BFA)阻斷分泌,提高胞內(nèi)信號(hào)強(qiáng)度。
             
              死活細(xì)胞區(qū)分
             
              使用死活染料(如7-AAD、PI)標(biāo)記死亡細(xì)胞,避免其自發(fā)熒光或非特異性吸附抗體導(dǎo)致的假陽性。
             
              注意:固定后的細(xì)胞無法用核酸類死活染料區(qū)分,需在染色前完成死活鑒定。
             
              上機(jī)檢測
             
              過濾樣本以去除團(tuán)塊,防止堵塞流式細(xì)胞儀。
             
              盡快上機(jī)檢測,避免熒光素猝滅(尤其是避光保存的樣本)。
             
              調(diào)整儀器電壓和補(bǔ)償,確保信號(hào)完整顯示,并設(shè)定閾值提高數(shù)據(jù)收集效率。
             
              四、質(zhì)量控制要點(diǎn)
             
              抗體選擇與優(yōu)化
             
              考慮抗體特異性、熒光素信號(hào)強(qiáng)度及標(biāo)記方式,避免同型對照來源或濃度不一致導(dǎo)致的偏差。
             
              通過抗體滴定實(shí)驗(yàn)確定最佳用量,減少背景染色或樣本浪費(fèi)。
             
              對照設(shè)置
             
              單染對照:確定各熒光通道的補(bǔ)償值。
             
              同型對照:排除非特異性結(jié)合。
             
              FMO對照:明確多色染色中的陽性分界。
             
              生物學(xué)對照:驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)條件對細(xì)胞狀態(tài)的影響。
             
              儀器校準(zhǔn)
             
              定期校準(zhǔn)流式細(xì)胞儀的光電倍增管電壓、增益及熒光補(bǔ)償,確保數(shù)據(jù)準(zhǔn)確性。
             
              根據(jù)陰性對照信號(hào)調(diào)整電壓,保持實(shí)驗(yàn)間一致性。
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